1.一种小鼠截短IL‑36α蛋白的生产方法，其特征在于，包括以下步骤 ：

1）构建pUC57‑mIL‑36α质粒：合成小鼠截短IL‑36α蛋白基因，克隆入pUC57载体质粒，构建pUC57‑mIL‑36α质粒；所述小鼠截短IL‑36α蛋白基因的DNA如SEQ ID NO.1所示；

2）PCR扩增：以P1和P2为特异性引物，在引物的两侧导入NcoⅠ和XhoⅠ酶切位点，以pUC57‑mIL‑36α质粒为模板，进行PCR扩增；所述的特异性引物P1和P2的序列为：P1：5’‑GGGCCATGGGCAGAGCAGCAAGCCC‑3’

P2：5’‑CCCCTCGAGATGCACCACGATCATTTC‑3’

PCR反应体系为：2×PfuMasterMix25μL，P1、P2引物各2μL，pUC57‑mIL‑36α质粒模板0.2μL，加双蒸水补充至50μL；PCR反应条件为：94℃预变性2min；94℃变性30s，53℃退火30s，72℃延伸35 s，扩增30个循环；72℃延伸10 min

3）pET28a‑mIL‑36α重组表达载体的构建：将PCR扩增产物和pET28a载体质粒分别用NcoⅠ、XhoⅠ进行双酶切，双酶切后凝胶回收IL‑36α与pET28a载体，回收后的IL‑36α与pET28a载体经T4连接酶定向连接，构建重组表达载体pET28a‑mIL‑36α；

4）转化：将重组表达载体pET28a‑mIL‑36α 转化大肠杆菌BL21，获得IL‑36α重组工程菌；

5）小鼠截短IL‑36α蛋白的诱导表达：将IL‑36α重组工程菌接种于含卡那霉素的LB培养基中，37℃、200r/min 震荡培养过夜；次日，以1:100比例扩大培养，37℃、210r/min 震荡培养3h，至OD600达到0.6时，加入终浓度为0.7mmol/L的IPTG，20℃，120 r/min进行诱导表达

20h，获得菌体；

6）小鼠截短IL‑36α蛋白的纯化：采用超声破碎法将获得的菌体裂解，离心取上清液，将上清液注入Ni‑NAT柱中，先用50mM咪唑洗脱，弃洗脱液，再用200mM咪唑洗脱，收集洗脱液，得纯化的小鼠截短IL‑36α蛋白。

2.根据权利要求1所述的一种小鼠截短IL‑36α蛋白的生产方法，其特征在于，所述的小鼠截短IL‑36α蛋白的氨基酸序列如SEQ ID NO.2所示。