1.一种菊叶薯蓣转基因毛状根诱导方法，其特征在于，包括如下步骤：S1.组培苗培养

将生根的菊叶薯蓣组培苗去掉根后转接到继代培养基上预培养10～20天，获得外植体；

S2.转基因工程菌的准备

将活化后的发根农杆菌C58C1经扩大培养后制备感受态细胞，然后转入含目的基因的表达载体，再筛选、鉴定，得到转基因发根农杆菌C58C1工程菌；

S3.转基因侵染菌液的制备

将步骤S2的转基因发根农杆菌C58C1工程菌经进行扩大培养，OD600在0.5～0.6时，离心收集菌种，然后用含有乙酰丁香酮的1/2MS液体培养基重悬菌体，至OD600在0.5～0.6，得到侵染菌液；

S4.侵染与共培养

将步骤S1的外植体于步骤S3的侵染菌液中侵染15～30min，侵染完毕后，移出外植体并去除外植体表面的液体，然后将外植体转接至含有乙酰丁香酮的MS固体培养基，于23～27℃黑暗共培养2～3天；

S5.毛状根的诱导

将外植体从共培养的培养基中取出，置于含有头孢噻肟钠抗生素无菌水中浸泡8～10分钟，然后用纯无菌水清洗2～4遍；待清洗完毕后将去除外植体表面的水分，然后将外植体转接至含有头孢噻肟钠的MS固体培养基中培养；

S6.毛状根的除菌培养

待外植体发根后12～16天，去掉外植体的茎、叶，将留下的毛状根转接到新的含头孢噻肟钠的MS固体培养基中，每两周转接一次，并且不断降低头孢噻肟钠的工作浓度直到为零；

S7.毛状根的液体扩大培养

将除菌培养后的毛状根从外植体分离成一条一条，然后接种到1/2MS液体培养基震荡培养。

2.根据权利要求1所述的菊叶薯蓣转基因毛状根诱导方法，其特征在于，还还包括转基因毛状根PCR检测：提取毛状根DNA，然后进行PCR鉴定，鉴定基因包括rol B、rol C以及转入的目的基因。

3.根据权利要求1或2所述的菊叶薯蓣转基因毛状根诱导方法，其特征在于，所述继代培养基为MS+0.05～0.3mg/L NAA+1.2～1.7mg/L 6-BA。

4.根据权利要求1或2所述的菊叶薯蓣转基因毛状根诱导方法，其特征在于，步骤S1预培养为23～27℃，光照强度1500～2500lx，每天光照时间14～18h，培养10～20天。

5.根据权利要求1或2所述的菊叶薯蓣转基因毛状根诱导方法，其特征在于，步骤S4所述侵染为26～30℃，130～160r/min震荡侵染15～30min。

6.根据权利要求1或2所述的菊叶薯蓣转基因毛状根诱导方法，其特征在于，步骤S3含有乙酰丁香酮的1/2MS液体培养基及步骤S4中含有乙酰丁香酮的MS固体培养基中乙酰丁香酮浓度为100～600μmol/L。

7.根据权利要求1或2所述的菊叶薯蓣转基因毛状根诱导方法，其特征在于，步骤S5所述含有头孢噻肟钠抗生素无菌水和含有头孢噻肟钠的MS固体培养中头孢噻肟钠浓度为200～300mg/L。

8.根据权利要求1或2所述的菊叶薯蓣转基因毛状根诱导方法，其特征在于，步骤S5所述培养为于23～27℃，光照强度1500～2500lx，每天光照时间14～18h，培养3～5天。

9.根据权利要求1或2所述的菊叶薯蓣转基因毛状根诱导方法，其特征在于，步骤S6第一次转接的MS培养基中头孢噻肟钠的工作浓度为250mg/L，第二次转接的头孢噻肟钠工作浓度为100mg/L，最后将材料转接到不含Cef的MS固体培养基中。

10.根据权利要求1或2所述的菊叶薯蓣转基因毛状根诱导方法，其特征在于，所述目的基因为GFP。