1.一种YPB肽段，其序列为P-P-R-K-K-K-R-K-H-R-L-W-A-A-H-C-R-K-I-Q-L-K-K-D-G-S-S。

2.如权利要求1所述的YPB肽段的应用，其特征在于通过YPB肽段与TAT和GGG合成，再标记上带有荧光的FITC，得到FITC-TAT-GGG-YPB多肽；所述FITC-TAT-GGG-YPB多肽用于阻遏YY1和EZH2的结合，进而抑制乳腺癌细胞增殖及肿瘤的生长。

3.根据权利要求2所述的YPB肽段的应用，其特征在于所述FITC-TAT-GGG-YPB多肽的序列为FITC-YGRKKRRQRRR-GGG-PPRKKKRKHRLWAAHCRKIQLKKDGSS。

4.如权利要求2所述的YPB肽段的筛选及FITC-TAT-GGG-YPB多肽的合成的方法，其特征在于该方法按以下步骤进行：

一、利用大肠杆菌表达His×6-YY1蛋白并进行纯化；将EZH2功能区域分为4个片段，构建GST-融合蛋白，并利用大肠杆菌进行蛋白表达和纯化，得到纯化后的GST-EZH2-Mut1、Mut2、Mut3和Mut4蛋白；

二、通过胺类偶合法将纯化后的His×6-YY1蛋白偶联到偶联用芯片上，然后利用生物大分子互作仪分别测定纯化后的GST-EZH2-Mut1、Mut2、Mut3和Mut4蛋白与His×6-YY1蛋白的结合程度，经过筛选，得到EZH2上一段负责与YY1的结合序列，将这一段序列命名为YPB肽段，其序列为P-P-R-K-K-K-R-K-H-R-L-W-A-A-H-C-R-K-I-Q-L-K-K-D-G-S-S；最后将YPB肽段与TAT和GGG合成，再标记上带有荧光的FITC，得到FITC-TAT-GGG-YPB多肽；所述FITC-TAT-GGG-YPB多肽的序列为FITC-YGRKKRRQRRR-GGG-PPRKKKRKHRLWAAHCRKIQLKKDGSS。

5.根据权利要求4所述的YPB肽段的筛选及FITC-TAT-GGG-YPB多肽的合成的方法，其特征在于步骤一中所述利用大肠杆菌表达His×6-YY1蛋白并进行纯化的步骤如下：(1)将YY1连接到pHis×6的原核表达载体上，构建得到pHis×6-YY1表达载体；将pHis×6-YY1表达载体转入到大肠杆菌BL21 Tuners菌株内，在含有50μg/mL卡那霉素的LB培养基中，在37℃的摇床中以220rpm的转速过夜培养；将过夜培养后的菌液按1：50的比例加入到含有50μg/mL卡那霉素的LB培养基中，在37℃下培养2h～3h；

(2)将步骤(1)培养后的菌液降至16℃，加入浓度为0.2mM的异丙基-β-D-硫代半乳糖苷，在16℃下继续培养6h～8h或过夜；将菌液在4,000×g、4℃下离心20min，收集细菌，然后用25mL的缓冲液I重悬，缓冲液I由20mM Tris·HCl、200mM NaCl、1mM DTT和pH7.5、1×蛋白酶抑制剂组成；将装有菌液的离心管在冰水的环境下进行超声波处理，每处理30s间歇

1min，直至菌体完全裂解；用20,000×g在4℃下离心30min，保留上清液，将上清液与1mL带有镍的树脂混合，在4℃下滚动结合2h，然后将树脂装入层析柱，先用20mM的咪唑洗涤层析柱两次、每次10mL，然后用40mM的咪唑洗涤层析柱两次、每次10mL，再用200mM的咪唑洗脱层析柱10次、每次200μL，得到含有His×6-YY1的洗脱样品；

(3)将含有His×6-YY1的洗脱样品合并，在4℃条件下进行透析，每隔5小时更换一次透析液，共更换三次透析液，透析液由1.5M NaCl、0.05M Tris-HCl和1mM DTT组成，pH为7.5；

将透析后的样品分装后冻存于-80℃下。

6.根据权利要求4所述的YPB肽段的筛选及FITC-TAT-GGG-YPB多肽的合成的方法，其特征在于步骤一中所述将EZH2功能区域分为4个片段，构建GST-融合蛋白，并进行蛋白表达和纯化，其步骤如下：(1)将EZH2的4个片段的编码序列分别连接到pGEX-4T-1表达载体上，构建得到pGEX-EZH2-Mut1、Mut2、Mut3和Mut4表达载体，分别将pGEX-EZH2-Mut1、2、3和4表达载体转入到大肠杆菌BL21 Tuners菌株内，在含有50μg/mL卡那霉素的LB培养基中，在37℃的摇床中以

220rpm的转速过夜培养；将培养后的菌液按1：50的比例加入到含有50μg/mL卡那霉素的LB培养基中，在37℃下培养2h～3h；

(2)将步骤(1)培养后的菌液降至16℃，加入浓度为0.2mM的异丙基-β-D-硫代半乳糖苷，在16℃下继续培养6h～8h或过夜；将菌液在4,000×g、4℃下离心20min，收集细菌，然后用25mL的缓冲液I重悬，缓冲液I由20mM Tris·HCl、200mM NaCl、1mM DTT和pH7.5、1×蛋白酶抑制剂组成；将装有菌液的离心管在冰水的环境下进行超声波处理，每处理30s间歇

1min，直至菌体完全裂解；用20,000×g在4℃下离心30min，保留上清液，将上清液与1mL偶联有谷胱甘肽的树脂混合，在4℃下滚动结合2h，然后将该树脂装入层析柱，样品在层析柱下端流出后，用10mL PBS洗涤两次层析柱，用洗脱液洗脱10次，每次200μL，得到洗脱后的样品，洗脱液由20mM谷胱甘肽和50mM Tris·HCl组成，pH为9.0；将洗脱后的样品合并，分装后冻存于-80℃下。

7.根据权利要求4所述的YPB肽段的筛选及FITC-TAT-GGG-YPB多肽的合成的方法，其特征在于步骤二中所述通过胺类偶合法将纯化后的His×6-YY1蛋白偶联到偶联用芯片上，然后在生物大分子互作仪上，利用该芯片分别测定纯化后的GST-EZH2-Mut1、Mut2、Mut3和Mut4蛋白与偶联在芯片上的His×6-YY1蛋白的结合情况，得出GST-EZH2-Mut3能够与His×

6-YY1蛋白结合；进一步将GST-EZH2-Mut3平均分成GST-EZH2-Mut3a、GST-EZH2-Mut3b和GST-EZH2-Mut3c，然后在生物大分子互作仪上，利用所述芯片分别测定GST-EZH2-Mut3a、GST-EZH2-Mut3b和GST-EZH2-Mut3c与His×6-YY1蛋白的结合情况，得出GST-EZH2-Mut3b能够与His×6-YY1蛋白结合；再进一步将EZH2-Mut3b缩短为EZH2-Mut3b-S1和EZH2-Mut3b-S2，并分别表达GST-EZH2-Mut3b、GST-EZH2-Mut3b-S1和GST-EZH2-Mut3b-S2，然后经纯化后，与His×6-YY1蛋白进行体外蛋白结合，使用树脂拉下上述GST-融合蛋白，使用YY1抗体对拉下的样品进行检测，得出GST-EZH2-Mut3b-S1能够结合His×6-YY1，而GST-EZH2-Mut3b-S2不能结合His×6-YY1；再将GST-EZH2-Mut3b-S1和GST-EZH2-Mut3b-S2的序列进行对比，得到YPB肽段。

8.根据权利要求4所述的YPB肽段的筛选及FITC-TAT-GGG-YPB多肽的合成的方法，其特征在于步骤二中所述纯化后的His×6-YY1蛋白与芯片偶联前，使用10mM、pH为4.5的NaOAc缓冲液进行稀释；步骤二中所述纯化后的GST-EZH2-Mut1、Mut2、Mut3和Mut4蛋白进行测定前，使用10mM、pH为7.4的HEPES缓冲液进行稀释。

9.根据权利要求4所述的YPB肽段的筛选及FITC-TAT-GGG-YPB多肽的合成的方法，其特征在于步骤二中所述利用偶联His×6-YY1蛋白的芯片分别测定纯化后的GST-EZH2-Mut1、Mut2、Mut3和Mut4蛋白与His×6-YY1蛋白的结合能力，其结合时间为90s，解离时间为120s。

10.根据权利要求4所述的YPB肽段的筛选及FITC-TAT-GGG-YPB多肽的合成的方法，其特征在于步骤二中所述的TAT的序列为Y-G-R-K-K-R-R-Q-R-R-R。