1.一种利用大桥虎耳草叶柄获得再生植株的方法，其特征在于，步骤如下：S1、材料处理及表面消毒：采集并种植大桥虎耳草野生植株，取大桥虎耳草叶柄，去除叶片，将叶柄冲洗干净后，浸没在新洁尔灭溶液中搅拌，然后取出至酒精溶液中短暂浸泡，然后使用灭菌水多次清洗，随后将叶柄浸泡在氯化汞溶液中进行消毒；

S2、愈伤组织的诱导培养：将经过表面消毒的叶柄切成条状作为外植体，将外植体接种至诱导培养基上进行愈伤组织诱导培养，培养温度维持室温，暗培养诱导出愈伤组织；

S3、愈伤组织的分化培养：将叶柄诱导的愈伤组织切割后，接于分化培养基上进行分化培养，置于培养室内，培养温度维持室温，保持光照，光照时间为12h/d,诱导出不定芽；

S4、不定芽的增殖培养：将分化出的不定芽切分后转移到芽增殖培养基进行芽的增殖培养，置于培养室内，维持室温培养并维持光照，光照时间为12h/d;S5、生根培养：将增殖的不定芽切分为单芽后转入生根培养基中，置于培养室，维持室温暗培养，诱导出根系；

S6、将带有根系的新芽种植，培养出新的大桥虎耳草植株；

所述诱导培养基，分化培养基，芽增殖培养基和生根培养基均含有改良MS培养基，所述改良MS培养基为NH4NO3、KNO3、MgSO4▪7H2O和KH2PO4含量减半，CaCl2▪2H2O含量不变的MS培养基；

在步骤S2中，所述诱导培养基的组分及含量为：改良MS培养基、1～2 mg/L的KT、0.2～

0.5mg/L的NAA、2g/L的PVP、30g/L蔗糖和琼脂粉6～7g/L；或改良MS培养基、0.1～0.2mg/L的TDZ、0.2～0.5mg/L的NAA、2g/L的PVP、30g/L的蔗糖和6～7g/L的琼脂粉；

在步骤S3中，所述分化培养基的组分及含量为：改良MS培养基、1～4mg/L的6‑BA、0.1～

0.2mg/L的NAA、2g/L的PVP、30g/L蔗糖和6～7g/L的琼脂粉；

所述芽增殖培养基的组分及含量为：改良MS培养基、 2～3mg/L的6‑BA、0.2mg/L的NAA、

30mg/L的蔗糖和6～7g/L的琼脂；或改良MS培养基、0.2～0.3mg/L的TDZ、0.2mg/L的NAA、

30g/L的蔗糖和6～7g/L的琼脂粉；

在步骤S5中，所述生根培养基的组分及含量为：改良MS培养基、0.2～0.5mg/L的NAA、

30g/L的蔗糖和6～7g/L的琼脂粉；或改良MS培养基、0.2～0.5mg/L的IBA、30g/L的蔗糖和6～7g/L的琼脂粉。

2.如权利要求1所述的利用大桥虎耳草叶柄获得再生植株的方法，其特征在于，步骤S4中，将分化出的不定芽切分后，每组含有2～3芽，转移到芽增殖培养基。

3.如权利要求1‑2任一项所述的利用大桥虎耳草叶柄获得再生植株的方法，其特征在于，所述诱导培养基，分化培养基，芽增殖培养基和生根培养基的pH值均为5.8～6.0。

4.如权利要求1所述的利用大桥虎耳草叶柄获得再生植株的方法，其特征在于，在步骤S2中，将经过表面消毒的叶柄切成长度在1‑1.5cm长条状作为外植体，而且将外植体平放接种到诱导培养基上进行愈伤组织诱导培养。

5.如权利要求1所述的利用大桥虎耳草叶柄获得再生植株的方法，其特征在于，在步骤S3和步骤S4中，光照强度均为1500‑2000LX。